ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ

Менингит у пациентки с первичной медиастинальной (тимической) В-крупноклеточной лимфомой, вызванный Listeria monocytogenes (собственное клиническое наблюдение)

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , ,

А.М. Пронина1, С.В. Журавлева1, Г.С. Юнаев1, И.З. Заводнова1, И.А. Курмуков2

1 ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

2  ГБУЗ «Московский клинический научный центр им. А.С. Логинова ДЗМ», ш. Энтузиастов, д. 86, Москва, Российская Федерация, 111123

Для переписки: Илдар Анварович Курмуков, канд. мед. наук, ш. Энтузиастов, д. 86, Москва, Российская Федерация, 111123; e-mail: kurmukovia@gmail.com

Для цитирования: Пронина А.М., Журавлева С.В., Юнаев Г.С. и др. Менингит у пациентки с первичной медиастинальной (тимической) В-крупноклеточной лимфомой, вызванный Listeria monocytogenes (собственное клиническое наблюдение). Клиническая онкогематология. 2020;13(4):420–5.

DOI: 10.21320/2500-2139-2020-13-4-420-425

РЕФЕРАТ

Листериоз с тяжелыми клиническими проявлениями в виде бактериемии, сепсиса и менингита/менингоэнцефалита является редкой, но серьезной проблемой сопроводительного лечения в онкогематологии. Ранняя диагностика листериоза, как и любой другой инфекции, затрудняется, если инфекционное заболевание манифестирует на фоне тяжелых общих проявлений злокачественного лимфопролиферативного заболевания или осложнений опухоли и его лечения. У пациентов с выраженным лекарственно-индуцированным нарушением иммунитета листериоз обычно характеризуется как быстроразвивающееся и, как правило, тяжело протекающее заболевание с высокой непосредственной летальностью. В статье представлено описание клинического наблюдения тяжелой листериозной инфекции у пациентки, поступившей в отделение реанимации и интенсивной терапии для лечения первичной медиастинальной (тимической) В-крупноклеточной лимфомы с массивным опухолевым образованием в переднем верхнем средостении, осложненной синдромами медиастинальной компрессии и сдавления верхней полой вены.

Ключевые слова: первичная медиастинальная (тимическая) В-крупноклеточная лимфома, листериоз, менингит, сопроводительная терапия.

Получено: 14 июня 2020 г.

Принято в печать: 17 сентября 2020 г.

Читать статью в PDF

ЛИТЕРАТУРА

  1. Hernandez-Milian A, Payeras-Cifre A. What Is New in Listeriosis? Biomed Res Int. 2014;2014:358051. doi: 10.1155/2014/358051.

  2. Pagliano P, Arslan F, Ascione T. Epidemiology and treatment of the commonest form of listeriosis: meningitis and bacteraemia. Le Infezioni in Medicina. 2017;25(3):210–6.

  3. Le Gall JR, Lemeshow S, Saulnier F. A new Simplified Acute Physiology Score (SAPS II) based on a European/North American multicenter study. JAMA. 1993;270(24):2957–63. doi: 10.1001/jama.1993.03510240069035.

  4. Knaus WA, Draper EA, Wagner DP, Zimmerman JE. APACHE II: a severity of disease classification system. Crit Care Med. 1985;13(10):818–29.

  5. Freitag NE, Port GC, Miner MD. Listeria monocytogenes – from saprophyte to intracellular pathogen. Nat Rev Microbiol. 2009;7(9):623–8. doi: 10.1038/nrmicro2171.

  6. Курмуков И.А. Бактериальные и грибковые инфекционные осложнения ближайшего и раннего периода трансплантации. Трансплантология. 2010;2:5–9. doi: 10.23873/2074-0506-2010-0-2-5-9.[Kurmukov IA. Bacterial and fungal infectious complications in the immediate and early periods of transplantation. Transplantologiya. 2010;2:5–9. doi: 10.23873/2074-0506-2010-0-2-5-9. (In Russ)]

  7. Jensen AK, Simonsen J, Ethelberg S. Use of Proton Pump Inhibitors and the Risk of Listeriosis: A Nationwide Registry-based Case-Control Study. Clin Infect Dis. 2017;64(7):845–51. doi: 10.1093/cid/ciw860.

  8. Yildiz O, Aygen B, Esel D, et al. Sepsis and Meningitis Due to Listeria Monocytogenes. Yonsei Med J. 2007;48(3):433–9. doi: 10.3349/ymj.2007.48.3.43

  9. Обухова О.А., Курмуков И.А., Боровкова Н.Б. и др. Диагностическая чувствительность биомаркеров сепсиса при тяжелой инфекции у онкологических больных, получивших противоопухолевое лечение. Онкогинекология. 2018:26(2):54–61.[Obukhova OA, Kurmukov IA, Borovkova NB, et al. Diagnostic sensitivity of biomarkers of sepsis resulting from severe infection in cancer patients who underwent antitumor treatment. Onkoginekologiya. 2018:26(2):54–61. (In Russ)]

  10. Курмуков И.А., Кашия Ш.Р., Обухова О.А. и др. Первичная диагностика сепсиса у пациентов, получающих лекарственное лечение по поводу онкологического заболевания: сравнение критериев SIRS и SOFA. Трансляционная медицина. 2017;4(2):46–51. doi: 10.18705/2311-4495-2017-4-2-46-51. [Kurmukov IA, Kashiya ShR, Obukhova OA, et al. Primary diagnosis of sepsis in patients receiving medical treatment for oncological disease: comparison of SIRS and SOFA criteria. Translational Medicine. 2017;4(2):46–51. doi: 10.18705/2311-4495-2017-4-2-46-51. (In Russ)]

  11. van Veen KEB, Brouwer MC, van der Ende A, et al. Bacterial Meningitis in Patients using Immunosuppressive Medication: a Population-based Prospective Nationwide Study. J Neuroimmune Pharmacol. 2017;12(2):213–8. doi: 10.1007/s11481-016-9705-6.

  12. Hof H. An update on the medical management of listeriosis. Expert Opin Pharmacother. 2004;5(8):1727–35. doi: 10.1517/14656566.5.8.1727.

Инвазивный микоз, обусловленный Aureobasidium pullulans, у ребенка с острым миелобластным лейкозом (собственное клиническое наблюдение)

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , ,

Н.С. Багирова1, А.В. Попа1, Т.С. Богомолова2, Н.А. Батманова1, Н.В. Дмитриева1, И.Н. Петухова1, Е.Н. Соколова1

1 ФГБУ «НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

2 ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, ул. Кирочная, д. 41, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 191015

Для переписки: Наталия Сергеевна Багирова, д-р мед. наук, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478; тел.: 8(499)324-18-60; e-mail: nbagirova@mail.ru

Для цитирования: Багирова Н.С., Попа А.В., Богомолова Т.С. и др. Инвазивный микоз, обусловленный Aureobasidium pullulans, у ребенка с острым миелобластным лейкозом (собственное клиническое наблюдение). Клиническая онкогематология. 2018;11(3):259–64.

DOI: 10.21320/2500-2139-2018-11-3-259-264

РЕФЕРАТ

Тяжелая микотическая инфекция, возникающая преимущественно у пациентов со сниженным иммунитетом, часто осложняет течение основного онкогематологического заболевания. Впервые в отечественной литературе мы представляем клинико-микробиологические особенности инвазивного микоза, обусловленного Aureobasidium pullulans, у ребенка с острым миелобластным лейкозом, получавшего цитостатическую и противогрибковую терапию с благоприятным исходом.

Ключевые слова: Aureobasidium pullulans, острый миелобластный лейкоз, инвазивный микоз.

Получено: 15 января 2018 г.

Принято в печать: 8 апреля 2018 г.

Читать статью в PDF 

ЛИТЕРАТУРА

  1. Revankar SG, Sutton DA. Melanized Fungi in Human Disease. Clin Microbiol Rev. 2010;23(4):884–928. doi: 10.1128/CMR.00019-10.
  2. Hussain N, Revankar SG. Black Mold Infections: What We Know and What We Need to Know. Curr Clin Microbiol Rpt. 2017;4(2):106–11. doi: 10.1007/s40588-017-0062-x.
  3. Salkin IF, Martinez JA, Kemna ME. Opportunistic infection of the spleen caused by Aureobasidium pullulans. J Clin Microbiol. 1986;23(5):828–31.
  4. Najafzadeh MJ, Sutton DA, Keisari MS, et al. In Vitro Activities of Eight Antifungal Drugs against 104 Environmental and Clinical Isolates of Aureobasidium pullulans. Agents Chemother. 2014;58(9):5629–31. doi: 10.1128/AAC.03095-14.

Инвазивный зигомикоз: эпидемиология и клинические особенности (обзор литературы)

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , ,

Н.С. Багирова

ФГБУ «Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина» Минздрава России, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

Для переписки: Наталия Сергеевна Багирова, д-р мед. наук, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478; тел.: +7(499)324-18-60; e-mail: nbagirova@mail.ru

Для цитирования: Багирова Н.С. Инвазивный зигомикоз: эпидемиология и клинические особенности (обзор литературы). Клиническая онкогематология. 2016;9(1):84–9.

DOI: 10.21320/2500-2139-2016-9-1-84-89

РЕФЕРАТ

Инвазивный зигомикоз стоит на 3-м месте по частоте после инвазивного кандидоза и аспергиллеза. Основные группы риска — онкогематологические больные, пациенты, подвергавшиеся аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток. Кроме того, зигомикоз имеет важное значение при сахарном диабете. В обзоре подробно представлены эпидемиология, факторы риска, клинические формы зигомикоза и особенности терапии.

Ключевые слова: зигомикоз, инвазивный зигомикоз, Zygomycetes.

Получено: 9 октября 2015 г.

Принято в печать: 1 ноября 2015 г.

Читать статью в PDF pdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Petrikkos G, Skiada A, Lortholary O, et al. Epidemiology and Clinical Manifestations of Mucormycosis. Clin Infect Dis. 2012;54(S1):S23–34. doi: 10.1093/cid/cir866.
  2. Skiada A, Pagano L, Groll A, et al. European Confederation of Medical Mycology Working Group on Zygomycosis. Zygomycosis in Europe: analysis of 230 cases accrued by the registry of the European Confederation of Medical Mycology (ECMM) Working Group on Zygomycosis between 2005 and 2007. Clin Microbiol Infect. 2011;17:1859–67. doi: 10.1111/j.1469-0691.2010.03456.x.
  3. Katragkou A, Walsh TJ, Roilides E. Why is mucormycosis more difficult to cure than more common mycoses? Clin Microbiol Infect. 2014;20(Suppl. 6):74–81. doi: 10.1111/1469-0691.12466.
  4. Zilberberg MD, Shorr AF, Huang H, et al. Hospital days, hospitalization costs, and inpatient mortality among patients with mucormycosis: a retrospective analysis of US hospital discharge data. BMC Infect Dis. 2014;14:310. doi: 10.1186/1471-2334-14-310.
  5. Blandine R, Lanternier F, Zahar J-R, et al. Healthcare-associated mucormycosis. Clin Infect Dis. 2012;54(Suppl. 1):S44–54. doi: 10.1093/cid/cir867.
  6. Ribes JA, Vanover-Sams CL, Baker DJ. Zygomycetes in human disease. Clin Microbiol Rev. 2000;13:236–301. doi: 10.1128/cmr.13.2.236-301.2000.
  7. Shenoi S, Emery HM. Successful treatment of invasive gastric mucormycosis in a child with systemic lupus erythematosus. Lupus. 2010;19:646–9. doi: 10.1177/0961203309349117.
  8. Wingard JR, Carter SL, Walsh TJ, et al. Randomized, double-blind trial of fluconazole versus voriconazole for prevention of invasive fungal infection after allogeneic hematopoietic cell transplantation. Blood. 2010;116:5111–8. doi: 10.1182/blood-2010-02-268151.
  9. Marks DI, Pagliuca A, Kibbler CC, et al. Voriconazole versus itraconazole for antifungal prophylaxis following allogeneic haematopoietic stem-cell transplantation. Br J Haematol. 2011;155:318–27. doi: 10.1111/j.1365-2141.2011.08838.x.
  10. Zaoutis TE, Roilides E, Chiou CC, et al. Zygomycosis in children: a systematic review and analysis of reported cases. Pediatr Infect Dis J. 2007;26:723–7. doi: 10.1097/inf.0b013e318062115c.
  11. Chamilos G, Marom EM, Lewis RE, et al. Predictors of pulmonary mucormycosis versus invasive pulmonary aspergillosis in patients with cancer. Clin Infect Dis. 2005;41:60–6. doi: 10.1086/430710.
  12. Wahba H, Truong MT, Lei X, et al. Reversed halo sign in invasive pulmonary fungal infections. Clin Infect Dis. 2008;46:1733–7. doi: 10.1086/587991.
  13. Roden MM, Zaoutis TE, Buchanan WL, et al. Epidemiology and outcome of mucormycosis: a review of 929 reported cases. Clin Infect Dis. 2005;41:634–53. doi: 10.1086/432579.
  14. Ibrahim AS, Gebremariam T, Husseiny MI, et al. Comparison of lipid amphotericin B preparations in treating murine zygomycosis. Antimicrob Agents Chemother. 2008;52:1573–6. doi: 10.1128/aac.01488-07.
  15. Lewis RE, Liao G, Hou J, et al. Comparative analysis of amphotericin B lipid complex and liposomal amphotericin B kinetics of lung accumulation and fungal clearance in a murine model of acute invasive pulmonary aspergillosis. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:1253–8. doi: 10.1128/aac.01449-06.
  16. Lewis RE, Albert ND, Liao G, et al. Comparative pharmacodynamics of amphotericin B lipid complex and liposomal amphotericin B in a murine model of pulmonary mucormycosis. Antimicrob Agents Chemother. 2010;54:1298–304. doi: 10.1128/aac.01222-09.
  17. Chamilos G, Lewis RE, Kontoyiannis DP. Delaying amphotericin B-based frontline therapy significantly increases mortality among patients with hematologic malignancy who have zygomycosis. Clin Infect Dis. 2008;47:503–9. doi: 10.1086/590004.
  18. Walsh TJ, Gamaletsou MN, McGinnis MR, et al. Early clinical and laboratory diagnosis of invasive pulmonary, extrapulmonary, and disseminated mucormycosis (zygomycosis). Clin Infect Dis. 2012;54(Suppl. 1):S55–60. doi: 10.1093/cid/cir868.
  19. Lewis RE, Lortholary O, Spellberg B, et al. How does antifungal pharmacology differ for mucormycosis versus aspergillosis? Clin Infect Dis. 2012;54(Suppl. 1):S67–72. doi: 10.1093/cid/cir884.

Диагностическое значение С-реактивного белка как маркера инфекции у больных с впервые выявленными острыми миелоидными лейкозами

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , , , , ,

Л.Н. Тарасова1, С.Г. Владимирова1, В.В. Черепанова2

1 ФГБУН «Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови» ФМБА России, ул. Красноармейская, д. 72, Киров, Российская Федерация, 610027

2 ГБУЗНО «Городская больница № 33», пр-т Ленина, д. 54, Нижний Новгород, Российская Федерация, 603122

Для переписки: Людмила Николаевна Тарасова, д-р биол. наук, профессор, ул. Красноармейская, д. 72, Киров, Российская Федерация, 610027; тел.: +7(8332)67-57-00; e-mail: vlsg@mail.ru

Для цитирования: Тарасова Л.Н., Владимирова С.Г., Черепанова В.В. Диагностическое значение С-реактивного белка как маркера инфекции у больных с впервые выявленными острыми миелоидными лейкозами. Клиническая онкогематология. 2015;8(4):442–446.

DOI: 10.21320/2500-2139-2015-8-4-442-446

РЕФЕРАТ

Цель. Установить диагностически значимый уровень С-реактивного белка (СРБ) как раннего маркера инфекции у больных с впервые выявленными острыми миелоидными лейкозами (ОМЛ), исследовать зависимость концентрации СРБ от количества лейкоцитов и бластных клеток крови.

Методы. СРБ определяли у 39 больных с впервые выявленным ОМЛ (17 мужчин, 22 женщины) в возрасте 20–76 лет (медиана 49 лет). Варианты ОМЛ по FAB-классификации: М0 — 2 пациента, М1 — 4, М2 — 23, М4 — 8 и М5 — 2.

Результаты. Концентрация СРБ у больных без симптомов инфекции (n = 16) находилась в пределах 0–43 мг/л (медиана 5,5 мг/л). Коэффициенты корреляции Спирмена между уровнем СРБ и количеством лейкоцитов и бластных клеток составили 0,664 (p = 0,006) и 0,473 (p = 0,062) соответственно. Полученные данные подтверждают активацию синтеза СРБ при развитии лейкоза. У пациентов с инфекцией и/или лихорадкой (n = 23) уровень СРБ был значимо выше, чем у лиц без инфекции (8–383 мг/л; медиана 81 мг/л). Корреляция между концентрацией СРБ и количеством лейкоцитов и бластных клеток отсутствовала. Следовательно, синтез СРБ в период манифестации ОМЛ значительно возрастает в ответ на инфекцию. В группах пациентов без инфекции и с инфекцией 95%-е доверительные интервалы равнялись 0–40 и 12–315 мг/л соответственно. Поскольку они перекрываются только в диапазоне 12–40 мг/л их можно трактовать как «серую зону». Концентрация СРБ, входящая в этот диапазон, дает основание предполагать у пациентов наличие инфекции. Уровень СРБ ниже 12 мг/л либо выше 40 мг/л с высокой долей вероятности свидетельствует об отсутствии либо наличии инфекционных осложнений соответственно.

Заключение. Таким образом, СРБ является доступным и информативным маркером инфекции у больных ОМЛ в период манифестации заболевания. Контроль его уровней позволит обоснованно начать своевременную антибактериальную терапию, а по динамике этого показателя можно судить об эффективности такого лечения.

Ключевые слова: острые миелоидные лейкозы, инфекционные осложнения, белки острой фазы, С-реактивный белок, бластные клетки, лейкоциты.

Получено: 20 апреля 2015 г.

Принято в печать: 22 октября 2015 г.

Читать статью в PDF pdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Абдулкадыров К.М., Чуданова Т.В. Диагностика и лечение бактериальных и микотических инфекций у больных гемобластозами. Вестник гематологии. 2005;1(3):5–13.
    [Abdulkadyrov KM, Chudanova TV. Diagnosis and treatment of bacterial and mycotic infections in patients with hemoblastoses. Vestnik gematologii. 2005;1(3):5–13. (In Russ)]
  2. Галстян Г.М., Городецкий В.М., Шулутко Е.М. и др. Полиорганная патология при септическом шоке у больных с гемобластозами. Анестезиология и реаниматология. 2000;2:36–40.
    [Galstyan GM, Gorodetskii VM, Shulutko EM, et al. Multiple organ impairment associated with septic shock in patients with hemoblastoses. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2000;2:36–40. (In Russ)]
  3. Черепанова В.В., Перевалова Н.Н., Тарасова Л.Н. и др. Нарушения гемостаза у больных острым миелобластным лейкозом в процессе полихимиотерапии. Гематология и трансфузиология. 2004;49(5):27–33.
    [Cherepanova VV, Perevalova NN, Tarasova LN, et al. Impairment of hemostasis in patients with acute myeloblastic leukemia during polychemotherapy. Gematologiya i transfuziologiya. 2004;49(5):27–33. (In Russ)]
  4. Паровичникова Е.Н., Савченко В.Г., Исаев В.Г. и др. Итоги многоцентрового рандомизированного исследования по лечению острых миелоидных лейкозов взрослых. Терапевтический архив. 2007;79(7):14–9.
    [Parovichnikova EN, Savchenko VG, Isaev VG, et al. Results of multicenter, randomized study to treat acute myeloid leukemia in adults. Terapevticheskii arkhiv. 2007;79(7):14–9. (In Russ)]
  5. Птушкин В.В., Багирова Н.С. Инфекционные осложнения у больных с онкогематологическими заболеваниями. В кн.: Клиническая онкогематология: руководство для врачей. Под ред. М.А. Волковой. М.: Медицина, 2001. С. 507–28.
    [Ptushkin VV, Bagirova NS. Infectious complications in patients with oncohematological malignancies. In: Volkova MA, ed. Klinicheskaya onkogematologiya: rukovodstvo dlya vrachei. (Clinical oncohematology: manual for physicians.) Moscow: Meditsina Publ.; 2001. p. 507–28. (In Russ)]
  6. Альес В.Ф., Миронов П.И., Шадчнев А.П. Этиология, эпидемиология и классификация сепсиса у детей. Анестезиология и реаниматология. 2002;1:63–6.
    [Al’es VF, Mironov PI, Shadchnev AP. Etiology, epidemiology, and classification of sepsis in children. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2002;1:63–6. (In Russ)]
  7. Levy MN, Fink MP, Marshall JC, et al. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference. Crit Care Med. 2003;31(4):1250–6. doi: 10.1097/01.ccm.0000050454.01978.3b.
  8. Белобородова Н.В., Попов Д.А. Диагностическая ценность некоторых маркеров инфекции в раннем послеоперационном периоде у кардиохирургических больных. Анестезиология и реаниматология. 2005;3:45–9.
    [Beloborodova NV, Popov DA. Diagnostic value of several infection markers during early postoperation period in cardiosurgical patients. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2005;3:45–9. (In Russ)]
  9. Миронов И.П., Цыденжапов Е.Ц., Михельсон В.А. Эволюция терминологии сепсиса у детей в последнее десятилетие. Анестезиология и реаниматология. 2006;1:69–73.
    [Mironov IP, Tsydenzhapov ETs, Mikhel’son VA. Evolution of sepsis terminology in children over last decade. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2006;1:69–73. (In Russ)]
  10. Abraham E, Matthay MF, Dinarello CA. Consensus Conference Definitions For Sepsis, Septic Shock, Acute Lung Injury And Acute Respiratory Distress Syndrome: Time For A Reevaluation. Crit Care Med. 2000;28(1):232–5. doi: 10.1097/00003246-200001000-00039.
  11. Титов В.Н., Близнюков О.П. С-реактивный белок: физико-химические свойства, методы определения и диагностическое значение. Клиническая лабораторная диагностика. 2004;4:3–9.
    [Titov VN, Bliznyukov OP. C-reactive protein: physico-chemical properties, test methods and diagnostic value. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2004;4:3–9. (In Russ)]
  12. Шепеленко А.Ф., Хацкевич В.Л., Лищенюк О.А. и др. Роль гуморальных маркеров активности воспаления в оценке адекватности стартовой антибактериальной химиотерапии внебольничной пневмонии. Военно-медицинский журнал. 2005;1:25–30.
    [Shepelenko AF, Khatskevich VL, Lishchenyuk OA, et al. Role of humoral markers of activity of inflammation in assessment of starting antibacterial chemotherapy of community-acquired pneumonia. Voenno-meditsinskii zhurnal. 2005;1:25–30. (In Russ)]
  13. Lopez JV, Rojo JM, Rodriguez OM, et al. Fever In Emergency Department: Screening For Severe Disease. Rev Clin Esp. 2008;208(3):130–4. doi: 10.1157/13115820.
  14. Тарасова Л.Н., Черепанова В.В., Мустафина Г.Н., Владимирова С.Г. С-реактивный белок как маркер инфекции у больных острым миелобластным лейкозом. Гематология и трансфузиология. 2009;54(5):27–31.
    [Tarasova LN, Cherepanova VV, Mustafina GN, Vladimirova SG. C-reactive protein as marker of infection in patients with acute myeloblast leukemia. Gematologiya i transfuziologiya. 2009;54(5):27–31. (In Russ)]
  15. Simon L, Gauvin F, Amre DK, et al. Serum procalcitinin and C-reactive protein levels as markers of bacterial infection: a systematic review and meta-analysis. Clin Bacter Dis. 2004;39:206–17. doi: 10.1086/421997.
  16. Владимирова С.Г., Тарасова Л.М., Скольская О.Ю., Черепанова В.В. С-реактивный белок как маркер тяжести инфекционного процесса у больных острым миелоидным лейкозом при нейтропении. Терапевтический архив. 2013;85(11):34–40.
    [Vladimirova SG, Tarasova LM, Skol’skaya OYu, Cherepanova VV. C-reactive protein as marker of severity of infection in patients with acute myeloid leukemia in neutropenia. Terapevticheskii arkhiv. 2013;85(11):34–40. (In Russ)]
  17. Владимирова С.Г., Тарасова Л.М., Докшина И.А., Черепанова В.В. Оценка чувствительности и специфичности метода определения С-реактивного белка при диагностике инфекционных осложнений у больных острым лимфобластным лейкозом, получающих химиотерапию. Клиническая лабораторная диагностика. 2014;59(11):17–21.
    [Vladimirova SG, Tarasova LM, Dokshina IA, Cherepanova VV. Evaluation of sensitivity and specificity of test method for C-reactive protein in diagnosis of infectious complications in patients with acute lymphoblast leukemia on chemotherapy. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2014;59(11):17–21. (In Russ)]
  18. Антонов В.Г., Козлов В.К. Патогенез онкологических заболеваний: иммунные и биохимические феномены и механизмы. Внеклеточные и клеточные механизмы общей иммунодепрессии и иммунной резистентности. Цитокины и воспаление. 2004;3(1):8–19.
    [Antonov VG, Kozlov VK. Pathogenesis on oncological diseases: immune and biological phenomena and mechanisms. Extracellular and cellular mechanisms of general immunosuppression and immune resistance. Tsitokiny i vospalenie. 2004;3(1):8–19. (In Russ)]
  19. Kwaan HC. Double hazard of thrombophilia and bleeding in leukemia. Hematol ASH Educ Book. 2007;1:151–7. doi: 10.1182/asheducation-2007.1.151.
  20. Галстян Г.М., Берковский А.Л., Зуева А.В. и др. Фактор некроза опухоли, интерлейкин-6, эндотоксин и прокальцитонин при септическом шоке у больных с опухолевыми заболеваниями системы крови. Терапевтический архив. 2002;74(7):56–61.
    [Galstyan GM, Berkovskii AL, Zueva AV, et al. Tumor necrosis factor, interleukin-6, endotoxin, and procalcitonin in septic shock in patients with hematological malignancies. Terapevticheskii arkhiv. 2002;74(7):56–61. (In Russ)]
  21. Carrigan SD, Scott G, Tabrizian M. Toward resolving the challenges of sepsis diagnosis. Clin Chem. 2004;50(8):1301–14. doi: 10.1373/clinchem.2004.032144.
  22. Косякова Н.И., Прохоренко С.В., Прохоренко И.Р. Дисбаланс продукции цитокинов у больных тяжелым хирургическим сепсисом. Иммунология. 2005;5:319–21.
    [Kosyakova NI, Prokhorenko SV, Prokhorenko IR. Disbalance of cytokine production in patients with severe surgical sepsis. Immunologiya. 2005;5:319–21. (In Russ)]
  23. Козлов В.К. Дисфункция иммунной системы в патогенезе сепсиса: возможности диагностики. Цитокины и воспаление. 2006;5(2):15–28.
    [Kozlov VK. Immune system dysfunction in pathogenesis of sepsis: possibilities of diagnosis. Tsitokiny i vospalenie. 2006;5(2):15–28. (In Russ)]
  24. ГОСТ Р 53022. Технологии лабораторные клинические. Требования к качеству клинических лабораторных исследований. Часть 3. Правила оценки клинической информативности лабораторных тестов. М., 2008.
    [GOST Р 53022. Clinical laboratory technologies. Requirements to quality of clinical laboratory investigations. Part 3. Guidelines for evaluation of clinical information value of lab tests. Moscow; 2008. (In Russ)]
  25. Клясова Г.А. Антимикробная терапия. В кн.: Программное лечение заболеваний системы крови: сборник алгоритмов диагностики и протоколов лечения заболеваний системы крови. Под ред. В.Г. Савченко. М.: Практика, 2012. С. 829–53.
    [Klyasova GA. Antimicrobial therapy. In: Savchenko VG, ed. Programmnoe lechenie zabolevanii sistemy krovi: sbornik algoritmov diagnostiki i protokolov lecheniya zabolevanii sistemy krovi. (Program treatment of hematological diseases: collection of algorithms of diagnosing and treatment protocols of hematological diseases.) Moscow: Praktika Publ.; 2012. p. 829–53. (In Russ)]

 

Местный иммунитет при орофарингеальном кандидозе у пациентов с онкогематологическими заболеваниямиорофарингеальный кандидоз, опухоли кроветворной и лимфоидной тканей, местный иммунитет, грибы рода Candida

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , , ,

Е.Ю. Данилова, Н.В. Шабашова, Е.В. Фролова, А.Е. Учеваткина, Л.В. Филиппова

ГБОУ ВПО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, ул. Кирочная, д. 41, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 191015

Для переписки: Евгения Юрьевна Данилова, соискатель кафедры клинической микологии, ул. Кирочная, д. 41, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 191015; тел.: +7(812)303-51-41; e-mail: danilovaimmuno@yandex.ru

Для цитирования: Данилова Е.Ю., Шабашова Н.В., Фролова Е.В. и др. Местный иммунитет при орофарингеальном кандидозе у пациентов с онкогематологическими заболеваниями. Клиническая онкогематология. 2015;8(4):436–441.

DOI: 10.21320/2500-2139-2015-8-4-436-441

РЕФЕРАТ

Цель. Изучить частоту орофарингельного кандидоза (ОФК) у пациентов с онкогематологическими заболеваниями в зависимости от варианта опухоли, противоопухолевого лечения, а также исследовать ключевые цитокины в образцах слюны.

Методы. В исследование включено 430 больных, отобрано 85 образцов слюны от больных ОФК (n = 38) и без такового. Контрольную группу составили 19 здоровых людей.

Результаты. Частота ОФК составила 9 % и практически не зависела от иммуноморфологического варианта опухоли и вида химиотерапии. До противоопухолевого лечения у всех больных был увеличен уровень TNF-a, IL-17 и G-CSF в образцах слюны. Синтез TNF-a (p < 0,05) снижался после противоопухолевого лечения. Кроме того, обнаруживалась тенденция к снижению продукции G-CSF и IL-17. При развитии ОФК выявлено снижение уровня МСР-1, IL-17, IFN-g.

Заключение. У больных с опухолями кроветворной и лимфоидной тканей с ОФК выявлены нарушения основных механизмов местной противогрибковой защиты.

Ключевые слова: орофарингеальный кандидоз, опухоли кроветворной и лимфоидной тканей, местный иммунитет, грибы рода Candida.

Получено: 1 июля 2015 г.

Принято в печать: 9 ноября 2015 г.

Читать статью в PDF pdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Абдулкадыров К.М., Чуданова Т.В. Диагностика и лечение бактериальных и микотических инфекций у больных гемобластозами. Вестник гематологии. 2005;1(3):5–13.
    [Abdulkadyrov KM, Chudanova TV. Diagnosis and treatment of bacterial and mycotic infections in patients with hemoblastoses. Vestnik gematologii. 2005;1(3):5–13. (In Russ)]
  2. Галстян Г.М., Городецкий В.М., Шулутко Е.М. и др. Полиорганная патология при септическом шоке у больных с гемобластозами. Анестезиология и реаниматология. 2000;2:36–40.
    [Galstyan GM, Gorodetskii VM, Shulutko EM, et al. Multiple organ impairment associated with septic shock in patients with hemoblastoses. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2000;2:36–40. (In Russ)]
  3. Черепанова В.В., Перевалова Н.Н., Тарасова Л.Н. и др. Нарушения гемостаза у больных острым миелобластным лейкозом в процессе полихимиотерапии. Гематология и трансфузиология. 2004;49(5):27–33.
    [Cherepanova VV, Perevalova NN, Tarasova LN, et al. Impairment of hemostasis in patients with acute myeloblastic leukemia during polychemotherapy. Gematologiya i transfuziologiya. 2004;49(5):27–33. (In Russ)]
  4. Паровичникова Е.Н., Савченко В.Г., Исаев В.Г. и др. Итоги многоцентрового рандомизированного исследования по лечению острых миелоидных лейкозов взрослых. Терапевтический архив. 2007;79(7):14–9.
    [Parovichnikova EN, Savchenko VG, Isaev VG, et al. Results of multicenter, randomized study to treat acute myeloid leukemia in adults. Terapevticheskii arkhiv. 2007;79(7):14–9. (In Russ)]
  5. Птушкин В.В., Багирова Н.С. Инфекционные осложнения у больных с онкогематологическими заболеваниями. В кн.: Клиническая онкогематология: руководство для врачей. Под ред. М.А. Волковой. М.: Медицина, 2001. С. 507–28.
    [Ptushkin VV, Bagirova NS. Infectious complications in patients with oncohematological malignancies. In: Volkova MA, ed. Klinicheskaya onkogematologiya: rukovodstvo dlya vrachei. (Clinical oncohematology: manual for physicians.) Moscow: Meditsina Publ.; 2001. p. 507–28. (In Russ)]
  6. Альес В.Ф., Миронов П.И., Шадчнев А.П. Этиология, эпидемиология и классификация сепсиса у детей. Анестезиология и реаниматология. 2002;1:63–6.
    [Al’es VF, Mironov PI, Shadchnev AP. Etiology, epidemiology, and classification of sepsis in children. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2002;1:63–6. (In Russ)]
  7. Levy MN, Fink MP, Marshall JC, et al. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference. Crit Care Med. 2003;31(4):1250–6. doi: 10.1097/01.ccm.0000050454.01978.3b.
  8. Белобородова Н.В., Попов Д.А. Диагностическая ценность некоторых маркеров инфекции в раннем послеоперационном периоде у кардиохирургических больных. Анестезиология и реаниматология. 2005;3:45–9.
    [Beloborodova NV, Popov DA. Diagnostic value of several infection markers during early postoperation period in cardiosurgical patients. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2005;3:45–9. (In Russ)]
  9. Миронов И.П., Цыденжапов Е.Ц., Михельсон В.А. Эволюция терминологии сепсиса у детей в последнее десятилетие. Анестезиология и реаниматология. 2006;1:69–73.
    [Mironov IP, Tsydenzhapov ETs, Mikhel’son VA. Evolution of sepsis terminology in children over last decade. Anesteziologiya i reanimatologiya. 2006;1:69–73. (In Russ)]
  10. Abraham E, Matthay MF, Dinarello CA. Consensus Conference Definitions For Sepsis, Septic Shock, Acute Lung Injury And Acute Respiratory Distress Syndrome: Time For A Reevaluation. Crit Care Med. 2000;28(1):232–5. doi: 10.1097/00003246-200001000-00039.
  11. Титов В.Н., Близнюков О.П. С-реактивный белок: физико-химические свойства, методы определения и диагностическое значение. Клиническая лабораторная диагностика. 2004;4:3–9.
    [Titov VN, Bliznyukov OP. C-reactive protein: physico-chemical properties, test methods and diagnostic value. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2004;4:3–9. (In Russ)]
  12. Шепеленко А.Ф., Хацкевич В.Л., Лищенюк О.А. и др. Роль гуморальных маркеров активности воспаления в оценке адекватности стартовой антибактериальной химиотерапии внебольничной пневмонии. Военно-медицинский журнал. 2005;1:25–30.
    [Shepelenko AF, Khatskevich VL, Lishchenyuk OA, et al. Role of humoral markers of activity of inflammation in assessment of starting antibacterial chemotherapy of community-acquired pneumonia. Voenno-meditsinskii zhurnal. 2005;1:25–30. (In Russ)]
  13. Lopez JV, Rojo JM, Rodriguez OM, et al. Fever In Emergency Department: Screening For Severe Disease. Rev Clin Esp. 2008;208(3):130–4. doi: 10.1157/13115820.
  14. Тарасова Л.Н., Черепанова В.В., Мустафина Г.Н., Владимирова С.Г. С-реактивный белок как маркер инфекции у больных острым миелобластным лейкозом. Гематология и трансфузиология. 2009;54(5):27–31.
    [Tarasova LN, Cherepanova VV, Mustafina GN, Vladimirova SG. C-reactive protein as marker of infection in patients with acute myeloblast leukemia. Gematologiya i transfuziologiya. 2009;54(5):27–31. (In Russ)]
  15. Simon L, Gauvin F, Amre DK, et al. Serum procalcitinin and C-reactive protein levels as markers of bacterial infection: a systematic review and meta-analysis. Clin Bacter Dis. 2004;39:206–17. doi: 10.1086/421997.
  16. Владимирова С.Г., Тарасова Л.М., Скольская О.Ю., Черепанова В.В. С-реактивный белок как маркер тяжести инфекционного процесса у больных острым миелоидным лейкозом при нейтропении. Терапевтический архив. 2013;85(11):34–40.
    [Vladimirova SG, Tarasova LM, Skol’skaya OYu, Cherepanova VV. C-reactive protein as marker of severity of infection in patients with acute myeloid leukemia in neutropenia. Terapevticheskii arkhiv. 2013;85(11):34–40. (In Russ)]
  17. Владимирова С.Г., Тарасова Л.М., Докшина И.А., Черепанова В.В. Оценка чувствительности и специфичности метода определения С-реактивного белка при диагностике инфекционных осложнений у больных острым лимфобластным лейкозом, получающих химиотерапию. Клиническая лабораторная диагностика. 2014;59(11):17–21.
    [Vladimirova SG, Tarasova LM, Dokshina IA, Cherepanova VV. Evaluation of sensitivity and specificity of test method for C-reactive protein in diagnosis of infectious complications in patients with acute lymphoblast leukemia on chemotherapy. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2014;59(11):17–21. (In Russ)]
  18. Антонов В.Г., Козлов В.К. Патогенез онкологических заболеваний: иммунные и биохимические феномены и механизмы. Внеклеточные и клеточные механизмы общей иммунодепрессии и иммунной резистентности. Цитокины и воспаление. 2004;3(1):8–19.
    [Antonov VG, Kozlov VK. Pathogenesis on oncological diseases: immune and biological phenomena and mechanisms. Extracellular and cellular mechanisms of general immunosuppression and immune resistance. Tsitokiny i vospalenie. 2004;3(1):8–19. (In Russ)]
  19. Kwaan HC. Double hazard of thrombophilia and bleeding in leukemia. Hematol ASH Educ Book. 2007;1:151–7. doi: 10.1182/asheducation-2007.1.151.
  20. Галстян Г.М., Берковский А.Л., Зуева А.В. и др. Фактор некроза опухоли, интерлейкин-6, эндотоксин и прокальцитонин при септическом шоке у больных с опухолевыми заболеваниями системы крови. Терапевтический архив. 2002;74(7):56–61.
    [Galstyan GM, Berkovskii AL, Zueva AV, et al. Tumor necrosis factor, interleukin-6, endotoxin, and procalcitonin in septic shock in patients with hematological malignancies. Terapevticheskii arkhiv. 2002;74(7):56–61. (In Russ)]
  21. Carrigan SD, Scott G, Tabrizian M. Toward resolving the challenges of sepsis diagnosis. Clin Chem. 2004;50(8):1301–14. doi: 10.1373/clinchem.2004.032144.
  22. Косякова Н.И., Прохоренко С.В., Прохоренко И.Р. Дисбаланс продукции цитокинов у больных тяжелым хирургическим сепсисом. Иммунология. 2005;5:319–21.
    [Kosyakova NI, Prokhorenko SV, Prokhorenko IR. Disbalance of cytokine production in patients with severe surgical sepsis. Immunologiya. 2005;5:319–21. (In Russ)]
  23. Козлов В.К. Дисфункция иммунной системы в патогенезе сепсиса: возможности диагностики. Цитокины и воспаление. 2006;5(2):15–28.
    [Kozlov VK. Immune system dysfunction in pathogenesis of sepsis: possibilities of diagnosis. Tsitokiny i vospalenie. 2006;5(2):15–28. (In Russ)]
  24. ГОСТ Р 53022. Технологии лабораторные клинические. Требования к качеству клинических лабораторных исследований. Часть 3. Правила оценки клинической информативности лабораторных тестов. М., 2008.
    [GOST Р 53022. Clinical laboratory technologies. Requirements to quality of clinical laboratory investigations. Part 3. Guidelines for evaluation of clinical information value of lab tests. Moscow; 2008. (In Russ)]
  25. Клясова Г.А. Антимикробная терапия. В кн.: Программное лечение заболеваний системы крови: сборник алгоритмов диагностики и протоколов лечения заболеваний системы крови. Под ред. В.Г. Савченко. М.: Практика, 2012. С. 829–53.
    [Klyasova GA. Antimicrobial therapy. In: Savchenko VG, ed. Programmnoe lechenie zabolevanii sistemy krovi: sbornik algoritmov diagnostiki i protokolov lecheniya zabolevanii sistemy krovi. (Program treatment of hematological diseases: collection of algorithms of diagnosing and treatment protocols of hematological diseases.) Moscow: Praktika Publ.; 2012. p. 829–53. (In Russ)]

Пневмоцистная пневмония после высокодозной химиотерапии с аутологичной трансплантацией периферических гемопоэтических стволовых клеток

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , ,

В.О. Саржевский1, В.Я. Мельниченко1, Д.С. Колесникова1, О.Ю. Бронов1, В.М. Сотников2, Н.Н. Смольцова2

1 ФГБУ «Национальный медико-хирургический центр им. Н.И. Пирогова» МЗ РФ, ул. Нижняя Первомайская, д. 70, Москва, Российская Федерация, 105203

2 ФГБУ «Российский научный центр рентгенорадиологии» МЗ РФ, ул. Профсоюзная, д. 86, стр. 5, Москва, Российская Федерация, 117997

Для переписки: В.О. Саржевский, канд. мед. наук, доцент, ул. Нижняя Первомайская, д. 70, Москва, Российская Федерация, 105203; тел.: +7(495)603-72-18; e-mail: vladsar@pochta.ru

Для цитирования: Саржевский В.О., Мельниченко В.Я., Колесникова Д.С., Бронов О.Ю., Сотников В.М., Смольцова Н.Н. Пневмоцистная пневмония после высокодозной химиотерапии с аутологичной трансплантацией периферических гемопоэтических стволовых клеток. Клин. онкогематол. 2014; 7(4): 583–586.

РЕФЕРАТ

Пневмоцистная пневмония — редкое осложнение высокодозной полихимиотерапии и аутологичной трансплантации костного мозга/периферических гемопоэтических стволовых клеток у больных со злокачественными новообразованиями кроветворной и лимфоидной тканей. Отсутствие типичных клинических проявлений, высокий риск летального исхода требуют особого подхода к этой проблеме. Краткий обзор литературы и клиническое наблюдение дают представление о клинических симптомах, особенностях течения, диагностике, профилактике и лечении пневмоцистной пневмонии у данной категории больных.

Ключевые слова: пневмоцистная пневмония, высокодозная химиотерапия, аутологичная трансплантация костного мозга.

Принято в печать: 19 сентября 2014 г.

Читать статью в PDF pdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Walzer P.D., Perl D.P., Krogstad D.J. et al. Pneumocystis carinii pneumonia in the United States: epidemiologic, diagnostic, and clinical features. Natl. Cancer Inst. Monogr. 1976; 43: 55–63.
  2. Green H., Paul M., Vidal L. et al. Prophylaxis of Pneumocystis pneumonia in immunocompromised non-HIV-infected patients: systematic review and metaanalysis of randomized controlled trials. Mayo Clin. Proc. 2007; 82(9): 1052–9.
  3. Colby C., McAfee S., Sackstein R. et al. A prospective randomized trial comparing the toxicity and safety of atovaquone with trimethoprim/ sulfamethoxazole as Pneumocystis carinii pneumonia prophylaxis following autologous peripheral blood stem cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 1999; 24(8): 897–902.
  4. Sattler F.R., Cowan R., Nielsen D.M. et al. Trimethoprim-sulfamethoxazole compared with pentamidine for treatment of Pneumocystis carinii pneumonia in the acquired immunodeficiency syndrome. A prospective, noncrossover study. Ann. Intern. Med. 1988; 109(4): 280–7.
  5. Hughes W., Leoung G., Kramer F. et al. Comparison of atovaquone (566C80) with trimethoprim-sulfamethoxazole to treat Pneumocystis carinii pneumonia in patients with AIDS. N. Engl. J. Med. 1993; 328(21): 1521–7.
  6. Metzner B., Gruneisl R., Gebauer W. et al. Late infectious complications after high-dose therapy and autologous blood stem cell transplantation. Med. Klin. (Munich) 2002; 97(11): 650–8.
  7. Decaudin D., Brousse N., Brice P. et al. Efficacy of autologous stem cell transplantation in mantle cell lymphoma: a 3-year follow-up study. Bone Marrow Transplant. 2000; 25(3): 251–6.
  8. Chen C.S., Boeckh M., Seidel K. Incidence, risk factors, and mortality from pneumonia developing late after hematopoietic stem cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 2003; 32(5): 515–22.
  9. Chuu W.M., Catlett J.P., Perry D.J. Concurrent Pneumocystis carinii and cytomegalovirus pneumonia after autologous peripheral blood stem cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 1999; 23(10): 1087–9.
  10. Kato H., Yamamoto K., Taji H. et al. Interstitial pneumonia after autologous hematopoietic stem cell transplantation in B-cell non-Hodgkin lymphoma. Clin. Lymphoma Myeloma Leuk. 2011; 11(6): 483–9.
  11. Munker R., Lazarus H.M., Atkinson K. The BMT Data Book, 2nd ed. Cambridge University Press, 2009: 245.

Клинико-иммунологические особенности инвазивного аспергиллеза у больных с лимфомой Ходжкина

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , ,

О.В. Шадривова1, Е.В. Фролова1, Л.В. Филиппова1, А.Е. Учеваткина1, С.Н. Хостелиди1, Р.М. Чернопятова1, Е.А. Десятик1, А.Г. Волкова2, Е.В. Шагдилеева1, Л.С. Зубаровская2, А.В. Рысев1, С.М. Игнатьева1, Т.С. Богомолова1, Ю.Н. Виноградова3, Н.В. Васильева1, Н.Н. Климко1

1 ГБОУ ВПО СЗГМУ им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Российская Федерация

2 НИИ детской онкологии, гематологии и трансплантологии им. Р.М. Горбачевой, Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, Санкт-Петербург, Российская Федерация

3 ФГБУ «Российский научный центр радиологии и хирургических технологий» МЗ РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация

РЕФЕРАТ

Инвазивный аспергиллез — тяжелая грибковая инфекция с высокой летальностью, возникающая преимущественно у онкогематологических больных на фоне выраженного иммунодефицита. Иммунные нарушения при инвазивном аспергиллезе у различных групп гематологических больных изучены недостаточно. Впервые мы представляем результаты исследования клинико-иммунологических особенностей инвазивного аспергиллеза у пациентов с лимфомой Ходжкина.

Ключевые слова: инвазивный аспергиллез, лимфома Ходжкина, иммунный ответ.

Читать статью в PDF pdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Kousha M., Tadi R., Soubani A.O. Pulmonary aspergillosis: a clinical review. Eur. Respir. Rev. 2011; 20(21): 156–72.
  2. Попова М.О., Зубаровская Л.С., Климко Н.Н., Афанасьев Б.В. Инва- зивные микозы при трансплантации гемопоэтических стволовых клеток. Тер. арх. 2012; 7: 50–7. [Popova M.O., Zubarovskaya L.S., Klimko N.N., Afanasyev B.V. Invasive mycoses in hematopoietic stem cell transplantation. Ter. arkh. 2012; 7: 50–7. (In Russ.)].
  3. Klimko N.N., Shadrivova O.V., Khostelidi S.N. et al. Invasive aspergillosis in Saint Petersburg, Russia: analysis of 445 proven and probable cases. Mycos. Diagn. Ther. Prophyl. Fungal Dis. 2013; 56(3): 113.
  4. Chaudhary N., Staab J.F., Marr K.A. Healthy Human T-Cell Responses to Aspergillus fumigatus Antigens. PLoS One 2010; 5(2): e9036.
  5. Carvalho A., Cunha C., Bistoni F., Romani L. Immunotherapy of aspergillosis. Microbiol. Infect. 2012; 18(2): 120–5.
  6. De Pauw B., Walsh T.J., Donnelly J.P. Revised definitions of invasive fungal disease from the European Organization for Research and Treatment of Cancer/ Invasive Fungal Infections Cooperative Group and the National Institute of Allergy and Infectious Diseases Mycoses Study Group (EORTC/MSG) Consensus Group. Clin. Infect. Dis. 2008; 46(12): 1813–21.
  7. Drgona L., Colita A., Klimko N. et al. Triggers for driving treatment of at-risk patients with invasive fungal disease. J. Antimicrob. Chemother. 2013; 68(3): 17–24.
  8. Landgren O., Pfeiffer R.M., Kristinsson S.Y., Bjorkholm M. Survival patterns in patients with Hodgkin’s Lymphoma with a pre-existing hospital discharge diagnosis of autoimmune disease. J. Clin. Oncol. 2010; 28(34): 5081–7.
  9. Landgren O., Engels E.A., Pfeiffer R.M. et al. Autoimmunity and Susceptibility to Hodgkin Lymphoma: A Population-Based Case–Control Study in Scandinavia. J. Nat. Cancer Inst. 2006; 98(18): 1321–30.
  10. Brusamolino E., Carella A.M. Treatment of refractory and relapsed Hodgkin’s lymphoma: facts and perspectives. Hematol. J. Open Access Publ. 2007; 92(1): 6–10.
  11. Лимфомы: научно-практическое издание. Под ред. А.М. Гранова, Н.В. Ильина. СПб., 2010: 272. [Limfomy: nauchno-prakticheskoe izdanie. Pod red. A.M. Granova, N.V. Ilina (Lymphomas: scientific-and-practical publication. Ed. by: A.M. Granov, N.V. Ilin). SPb., 2010: 272 .]
  12. Chai L.Y., Vonk A.G., Kullberg B.-J., Netea M.G. Immune Response to Aspergillus fumigatus in Compromised Hosts: From Bedside to Bench. Fut. Microbiol. 2011; 6(1): 73–83.
  13. Zitvogel L., Apetoh L., Ghiringhelli F., Kroemer G. Immunological aspects of cancer chemotherapy. Immunology 2008; 8: 59–73.
  14. Motoyoshi Y., Kaminoda K., Saitoh O. et al. Different mechanisms for anti-tumor effects of low- and high-dose cyclophosphamide. Oncol. Rep. 2006; 16(1): 141–6.
  15. Segal B.H. Role of macrophages in host defense against aspergillosis and strategies for immune augmentation. Oncologist 2007; 12(2): 7–13.
  16. Stevens D.A. Th1/Th2 in aspergillosis. Med. Mycol. 2006; 44(1): 229–35.
  17. Chai L.Y., Netea M.G., Teerenstra S. et al. Early Proinflammatory Cytokines and C-Reactive Protein Trends as Predictors of Outcome in Invasive Aspergillosis. J. Infect. Dis. 2010; 202(9): 1454–62.
  18. Фролова Е.В., Шадривова О.В., Филиппова Л.В. и др. Состояние иммунного статуса у гематологических пациентов с инвазивным аспергил- лезом. Журн. инфектол. 2012; 4(4): 59–64. [Frolova Ye.V., Shadrivova O.V., Filippova L.V., et al. Immune status in hematological patients with invasive aspergillosis. Zhurn. infektol. 2012; 4(4): 59–64. (In Russ.)].
  19. Park S.J., Mehrad B. Innate Immunity to Aspergillus Species. Clin. Microbiol. Rev. 2009; 22(4): 535–51.
  20. Hebart H., Bollinger C., Fisch P. et al. Analysis of T-cell responses to Aspergillus fumigatus antigens in healthy individuals and patients with hematologic malignancies. Blood 2002; 100(13): 4521–8.
  21. Chai L.Y., van de Veerdonk F., Marijnissen R.J. et al. Anti-Aspergillus human host defense relies on type 1 T helper (Th1), rather than type 17 T helper (Th17), cellular immunity. Immunology 2010; 130(1): 646–54.
  22. Van de Veerdonk F., Netea M.G. T-cell Subsets and Antifungal Host Defenses. Curr. Fung. Infect. Rep. 2010; 4(4): 238–43.

Неизвестные бактерии в микрофлоре ротовой полости у детей с онкогематологическими заболеваниями

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , , ,

М.Ф. Вечерковская, Г.В. Тец, В.В. Тец

Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, Санкт-Петербург, Российская Федерация

РЕФЕРАТ

Целью настоящей работы было изучить микробиоту ротовой полости у детей с онкогематологическими заболеваниями. У этой категории пациентов из смешанных биопленок изолирован микроорганизм, не встречающийся у здоровых детей того же возраста. Данные микробиологического изучения, оценка протеома и характеристик генома, включая его полный сиквенс, показали принадлежность выделенного микроба к ранее неизвестному виду стрептококков.

Ключевые слова: «пока некультивируемые бактерии», биопленки, микробиота, дети.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. Sommer F., Backhed F. The gut microbiota — masters of host development and physiology. Nat. Publ. Group 2013; 11: 227–38.
  2. Lewis K., Epstein S.S. Persisters, biofilms, and the problem of culturability in incultivated microorganisms. In Series: Microbiology Monographs. Ed. by A. Steinbuchel. Berlin, Heidelberg: Springer, 2009: 181–94.
  3. Epstein S.S. General model of microbial uncultivability in uncultivated microorganisms. In Series: Microbiology Monographs. Ed. by A. Steinbuchel. Berlin, Heidelberg: Springer, 2009: 131–50.
  4. Тец В.В., Вечерковская М.Ф., Доморад А.А. и др. Микробы, неизвестные как представители нормальной микрофлоры ротовой полости человека. Ученые записки СПбГМУ им. И.П. Павлова 2012; 3: 5–9. 5. [Tets V.V., Vecherkovskaya M.F., Domorad A.A., et al. Microbes unknown as members of normal human oral microflora. Uchenyye zapiski SPbGMU im. I.P. Pavlova 2012; 3: 5–9. (In Russ.)].
  5. Тец Г.В., Викина Д.С., Вечерковская М.Ф., Доморад А.А. и др. Новые подходы к изучению условно патогенных бактерий микрофлоры ротовой полости человека. Стоматология 2013; 1: 14–6.
  6. [Tets G.V., Vikina D.S., Vecherkovskaya M.F., Domorad A.A., et al. New approaches to studying opportunistic bacteria of human oral microflora. Stomatologiya 2013; 1: 14–6. (In Russ.)].
  7. Crielaard W., Zaura E., Schuller A.A. et al. Exploring the oral microbiota of children at various developmental stages of their dentition in the relation to their oral health. BMC Med. Genom. 2011; 4: 22.
  8. Johansson M.A., Sjogren Y.M., Persson J.O. et al. Early Colonization with a Group of Lactobacilli Decreases the Risk for Allergy at Five Years of Age Despite Allergic Heredity. PLoS One 2011; 29(35): 5860–8.
  9. Candela M., Rampelli S., Turroni S. et al. Unbalance of intestinal microbiota in atopic children. BMC Microbiol. 2012; 12: 95.
  10. Tanner A.C., Kent R.L. Jr., Holgerson P.L. et al. Microbiota of severe early childhood caries before and after therapy. J. Dent. Res. 2011; 90: 1298–305.
  11. Payne A.N., Chassard C., Zimmermann M. et al. The metabolic activity of gut microbiota in obese children is increased compared with normal-weight children and exhibits more exhaustive substrate utilization. Nutr. Diab. 2011; 1(7): e12.
  12. Javed F., Utrija A., Bello Correa F.O. et al. Oral health status in children with acute lymphoblastic leukemia. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2012; 83: 303–9.
  13. Lanzos I., Herrera D., Santos S. et al. Microbiological effects of an antiseptic mouth-rinse in irradiated cancer patients. Med. Oral Patol. Oral Cir. Bucal. 2011; 16(7): e1036–42.
  14. Wilson K. Preparation of Genomic DNA from Bacteria. Curr. Prot. Mol. Biol. John Wiley and Sons, Inc., 2003.
  15. Wright E.S., Yilmaz L.S., Noguera D.R. DECIPHER, a search-based approach to chimera identification for 16S rRNA sequences. Appl. Environ. Microbiol. 2012; 78: 717–25.
  16. Ludwig W., Strunk O., Westram R. et al. ARB: a software environment for sequence data. Nucl. Acids Res. 2004; 32: 1363–71.
  17. Tetz V.V. Colony-like communities of bacteria. Microbios. 1994; 80: 63–5.
  18. Tetz V.V. Formation and structure of mixed bacterial communities. APMIS 1999; 107: 645–54.
  19. Тец В.В. Роль микрофлоры полости рта в развитии заболеваний человека. Стоматология 2008; 3: 76–80. [Tets G.V. Role of oral microflora in development of human diseases. Stomatologiya 2008; 3: 76–80. (In Russ.)].

Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных

ИНФЕКЦИИ В ОНКОГЕМАТОЛОГИИ , , , , , ,

Багирова Н.С. 

ФГБНУ «Российский онкологический научный центр им. Н.Н. Блохина», Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478

Для переписки: Наталья Сергеевна Багирова, д-р мед. наук, Каширское ш., д. 24, Москва, Российская Федерация, 115478; тел.: +7(499)324-18-60; e-mail: nbagirova@mail.ru

Для цитирования: Багирова Н.С. Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных. Клиническая онкогематология. 2015;8(2):191–200.

РЕФЕРАТ

Актуальность и цели. В онкогематологии инфекции являются одной из основных причин летальности у больных. Меняющиеся эпидемиологические закономерности отражают не только появление новых возбудителей инфекций кровотока, но и рост резистентности патогенов к противомикробным препаратам. Очень важно проводить постоянный мониторинг таксономической структуры возбудителей инфекций кровотока и их резистентности к антимикробным препаратам в целях адекватной и своевременной терапии тяжелых инфекций. Цель — анализ таксономической структуры возбудителей, выделенных при диагностике бактериемии у взрослых онкогематологических больных с использованием современных приборов, и эффективности терапии тяжелых инфекций.

Методы. Проведено микробиологическое исследование образцов крови онкогематологических больных при подозрении на сепсис и другие тяжелые инфекции за период с 2005 по 2013 г. Диагностику бактериемии проводили с использованием геманализаторов-инкубаторов Bactec FX400 (Becton Dickinson, США) и Bact/Alert (BioMerieux, Франция), идентификацию штаммов — с использованием масс-спектрометра MALDI-TOF Microflex LT (Biotyper, Bruker Daltonics, Германия). Чувствительность к антимикробным препаратам определяли на автоматическом анализаторе Microscan Walk Away 40/96+ (Siemens, Германия) и Vitek 2 (BioMerieux, Франция). Представлены сравнительные данные зарубежных исследователей.

Результаты. Было получено 3794 гемокультуры, из которых в 600 (15,8 %) случаях отмечен рост. Только 210 (53,6 %) из 392 штаммов были расценены как возбудители истинной бактериемии. Статистически значимых различий в частоте выделения грамположительных кокков (47,6 %) и грамотрицательных палочек (39,5 %) не выявлено. Грибы регистрировались статистически значимо реже грамположительных кокков и грамотрицательных палочек (9 %; p < 0,0001). Прочие микроорганизмы составили 3,8 %.

Заключение. Терапия и профилактика инфекционных осложнений у онкогематологических больных сопровождаются развитием нарастающей резистентности возбудителей к антибиотикам. Изменения в таксономической структуре возбудителей инфекций кровотока необходимо учитывать при назначении эмпирической и этиотропной терапии.

Ключевые слова: инфекции, рак, инфекции кровотока, бактериемия, антимикробная резистентность, онкогематологические заболевания, антимикробная терапия.

Получено: 12 января 2015 г.

Принято в печать: 30 января 2015 г.

Читать статью в PDFpdficon

ЛИТЕРАТУРА

  1. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). Annual epidemiological report on communicable diseases in Europe 2008. Stockholm: ECDC; 2008.
  2. Pien BC, Sundaram P, Raoof N, et al. The clinical and prognostic importance of positive blood cultures in adults. Am J Med. 2010;123(9):819–28. doi: 10.1016/j.amjmed.2010.03.021.
  3. Dreyer AW. Blood Culture Systems: From Patient to Result. In: Azevedo L, ed. Sepsis – An Ongoing and Significant Challenge. InTech; 2012. pp. 287–310. doi: 10.5772/2958.
  4. Dellinger RP, Carlet JM, Masur H, et al. Surviving sepsis campaign guidelines for management of severe sepsis and septic shock. Crit Care Med. 2004;32(3):858–73. doi: 10.1097/01.ccm.0000117317.18092.e4.
  5. Kumar A, Roberts D, Wood KE, et al. Duration of hypotension before initiation of effective antimicrobial therapy is the critical determinant of survival in human septic shock. Crit Care Med. 2006;34(6):1589–96. doi: 10.1097/01.ccm.0000217961.75225.e9.
  6. Girmenia C, Menichetti F. Current Epidemiology and Prevention of Infectious Complications in Cancer Patients. Eur Oncol Haematol. 2011;7(4):270–7. doi: 10.17925/eoh.2011.07.04.270.
  7. Baron EJ, Miller JM, Weinstein MP, et al. A guide to utilization of the microbiology laboratory for diagnosis of infectious diseases: 2013 recommendations by the Infectious Diseases Society of America (IDSA) and the American Society for Microbiology (ASM)a. Clin Infect Dis. 2013;57(4): e22–e121. doi: 10.1093/cid/cit278.
  8. Багирова Н.С. Микробиологическая диагностика и рациональные подходы к терапии сепсиса у онкогематологических больных: Автореф. ¼ д-ра мед. наук. М., 2003. 274 с.
    [Bagirova NS. Mikrobiologicheskaya diagnostika i ratsional’nye podkhody k terapii sepsisa u onkogematologicheskikh bol’nykh. (Microbiological diagnosing and rational approaches to therapy of sepsis in oncohematological patients.) [dissertation] Moscow; 2003. 274 p. (In Russ)]
  9. Багирова Н.С., Дмитриева Н.В. Микробиологическая диагностика бактериемии. Пособие для врачей. М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2004. 35 с.
    [Bagirova NS, Dmitrieva NV. Mikrobiologicheskaya diagnostika bakteriemii. Posobie dlya vrachei. (Microbiological diagnosing of bacteriemia. Manual for physicians.) Moscow: Ministerstvo zdravookhraneniya Rossiiskoi Federatsii Publ.; 2004. 35 p. (In Russ)]
  10. Багирова Н.С. Современное состояние диагностики бактериемии. Сопроводительная терапия в онкологии. 2006;3:23–38.
    [Bagirova NS. State-of-the-art diagnostics of bacteriemia. Soprovoditel’naya terapiya v onkologii. 2006;3:23–38. (In Russ)]
  11. Laupland KB, Deirdre CL. Population-Based Epidemiology and Microbiology of сommunity-Onset Bloodstream Infections. Clin Microbiol Rev. 2014;27(4):647–64. doi: 10.1128/cmr.00002-14.
  12. Molnar Z, Fogas J. Timing IgM treatment in sepsis: is procalcitonin the answer? In: Vincent J-L, ed. Annual update in intensive care and emergency medicine 2012. Springer; 2012. pp. 109–15.
  13. Freifeld AG, Bow EJ, Sepkowitz KA, et al. Clinical Practice Guideline for the Use of Antimicrobial Agents in Neutropenic Patients with Cancer: 2010 Update by the Infectious Diseases Society of America (IDSA Guidelines). Clin Infect Dis. 2011;52(4):e56–e93. doi: 10.1093/cid/cir073.
  14. European Centre for Disease Prevention and Control (ECDC). Annual epidemiological report on communicable diseases in Europe 2009. Stockholm, European Centre for Disease Prevention and Control (Surveillance Report – 2.6 Antimicrobial resistance and healthcare-associated infections); 2010. рр. 167–78.
  15. Bagirova N, Dmitrieva N. Bacteriemia in patients with hematological malignancies. J Clin Microbiol Infect Dis. 2005;11(Suppl 2):678.
  16. Bal AM, Garau J, Gould IM, et al. Vancomycin in the treatment of meticillin-resistant Staphylococcus auseus (MRSA) infection: End or an era? J Glob Antimic Resist. 2013;1(1):23–30. doi: 10.1016/j.jgar.2013.01.002.
  17. Peel T, Cheng AC, Spelman T, et al. Differing risk factor for vancomycin-resistant and vancomycin-sensitive enterococcal bacteraemia. J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;18(4):388–94. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03591.x.
  18. Kim YJ, Kim SI, Hong KW, et al. Carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii: diversity of resistant mechanism and risk factor for infection. Epidemiol Infect. 2012;140(1):137–45. doi: 10.1017/s0950268811000744.
  19. Vila J, Pachon J. Acinetobacter baumannii resistant to everything: what should we do? J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;17(7):955–6. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03566.x.
  20. Villa-Fares X, Garcia de La Maria C, Lopez-Rojas R, et al. In vitro activity of several antimicrobial peptides against colistin-susceptible and colistin-resistant Acinetobacter baumannii. J Clin Microbiol Infect Dis. 2011;18(4):383–7. doi: 10.1111/j.1469-0691.2011.03581.x.
  21. Bagirova NS, Dmitrieva NV, Blokhin NN. Yeasts in patients (PTS) with hematologic malignancies (HM). Intern J Infect Dis. 2002;6(Suppl 2):S45. doi: 10.1016/s1201-9712(02)90273-0.
  22. Pfaller MA, Diekema DJ. Progress in antifungal susceptibility testing of Candida spp. by use of Clinical and Laboratory Standards Institute broth microdilution methods, 2010 to 2012. J Clin Microbiol. 2012;50(9):2846–56. doi: 10.1128/jcm.00937-12.
  23. Ranque S, Lachaud L, Gari-Toussaint M, et al. Interlaboratory reproducibility of Etest amphotericin B and caspofungin yeast susceptibility testing and comparison with the CLSI method. J Clin Microbiol. 2012;50(7):2305–9. doi: 10.1128/jcm.00490-12.
  24. Rangaraj G, Granwehr BP, Jiang Y, et al. Perils of quinolone exposure in cancer patients: breakthrough bacteremia with multidrug-resistant organisms. Cancer. 2010;116(4):967–73. doi: 10.1002/cncr.24812.